Daidzeina

Model kulkowy cząsteczki daidzeiny (związku klasy izoflawonów)

Daidzeina (7-hydroksy-3-(4-hydroksyfenylo)-4H-chromen-4-on) – związek pochodzenia roślinnego, który naturalnie występuje w soi oraz innych roślinach strączkowych. Należy do fitoestrogenów. Daidzeina i inne izoflawony są wytwarzane w roślinach poprzez szlak fenylopropanoidowy metabolizmu wtórnego i są wykorzystywane jako nośniki sygnału i odpowiedzi obronne na ataki patogenne[1]. Posiada właściwości antyoksydacyjne. Daidzeina może posiadać potencjał w zapobieganiu oraz leczeniu chorób sercowo-naczyniowych, łagodzenia menopauzy, osteoporozy, obniżania ryzyka niektórych nowotworów związanych z hormonami oraz działania przeciwzapalnego[2][3].

Naturalne występowanie

Wzór strukturalny daidzeiny

Daidzeina i inne związki izoflawony, takie jak genisteina, są obecne w wielu roślinach, w tym w ziołach, jak opornik łatkowaty Pueraria lobata i Pueraria mirifica. Ten fitoestrogen można znaleźć w kulturach komórkowych Maackia amurensis[4]. Daidzeina, czyli izoflawon sojowy to związek występujący w soi i z niej izolowany. Całkowite izoflawony w ziarnach soi to – ogólnie – 37% daidzeiny, 57% genisteiny i 6% glicytyny, zgodnie z danymi USDA[5].

Biosynteza

Historia

Szlak izoflawonoidów od dawna badano ze względu na jego występowanie w różnych gatunkach roślin, w tym rolę w pigmentacji wielu kwiatów, a także tworzeniu sygnałów dla roślin i drobnoustrojów. Sugerowano, że enzym syntazy izoflawonu (IFS) należy do rodziny oksygenaz P-450, co zostało potwierdzone przez laboratorium Shinichi Ayabe w 1999. IFS występuje w dwóch izoformach, w przypadku których można stosować zarówno likwirytygeninę, jak i naryngeninę, aby otrzymać odpowiednio daidzeinę i genisteinę[6].

Ścieżka

Daidzeina jest izoflawonoidem pochodzącym ze szlaku szikimowego (kwasu szikimowego), który tworzy heterocykl zawierający tlen poprzez enzym zależny od cytochromu P-450, który jest zależny od NADPH.

Proponowana biosynteza daidzeiny

Biosynteza daidzeiny rozpoczyna się od L-fenyloalaniny i podlega ogólnej ścieżce fenylopropanoidowej, w której pierścień aromatyczny pochodzący z szikimatu jest przesunięty na sąsiedni węgiel heterocyklu[7]. Proces rozpoczyna się od ligazy fenyloalaninowej (PAL) odcinającej grupę aminową od L-Phe, tworząc kwas cynamonowy (nienasycony kwas karboksylowy). Kwas cynamonowy jest następnie hydroksylowany przez białko błonowe cynamonian-4-hydroksylazę (C4H) z wytworzeniem kwasu p-kumarowego. Kwas p-kumarowy następnie działa jako jednostka startowa, która zostaje obciążona koenzymem A przez 4-kumaroloil: CoA-ligazę (4CL). Jednostka początkowa (A) przechodzi następnie trzy iteracje malonylo-CoA, co skutkuje (B), gdzie enzymy syntazy chalkonu (CHS) i reduktazy chalkonu (CHR) modyfikują w celu uzyskania trihydroksyalkonu. CHR zależy od NADPH. Izomeraza chalkonowa (CHI) następnie izomeryzuje trihydroksychalkon do likwirytygeniny – prekursora daidzeiny[6].

Zaproponowano mechanizm rodnikowy w celu otrzymania daidzeiny z likwirytygeniny, w której enzym zawierający żelazo, a także kofaktory NADPH i tlenu są wykorzystywane przez syntazę 2-hydroksyizoflawonu do utleniania likwirytygeniny do rodnikowego związku pośredniego (C). Kolejno następuje migracja 1,2 arylu do postaci (D), która następnie utlenia się do (E). Ostatnim etapem jest odwodnienie grupy hydroksylowej na C2, które następuje przez dehydratazę 2-hydroksyizoflawanonu z wytworzeniem daidzeiny[1][7].

Przypisy

  1. a b Woosuk Jung i inni, Identification and expression of isoflavone synthase, the key enzyme for biosynthesis of isoflavones in legumes, „Nature Biotechnology”, 18 (2), 2000, s. 208–212, DOI10.1038/72671, ISSN 1087-0156 [dostęp 2019-11-06].
  2. Qiao Wang i inni, Preparation and Pharmacokinetic Study of Daidzein Long-Circulating Liposomes, „Nanoscale Research Letters”, 14 (1), 2019, DOI10.1186/s11671-019-3164-y, ISSN 1931-7573 [dostęp 2019-11-06].
  3. M Casanova, Developmental effects of dietary phytoestrogens in Sprague-Dawley rats and interactions of genistein and daidzein with rat estrogen receptors alpha and beta in vitro, „Toxicological Sciences”, 51 (2), 1999, s. 236–244, DOI10.1093/toxsci/51.2.236, ISSN 1096-0929 [dostęp 2019-11-06].
  4. S.A Fedoreyev i inni, Isoflavonoid production by callus cultures of Maackia amurensis, „Fitoterapia”, 71 (4), 2000, s. 365–372, DOI10.1016/S0367-326X(00)00129-5 [dostęp 2019-11-06] (ang.).
  5. Contents, „Food and Nutritional Components in Focus”, P007–P025, DOI10.1039/9781849735094-fp007, ISSN 2045-1709 [dostęp 2019-11-06].
  6. a b Brenda Winkel-Shirley, Flavonoid Biosynthesis. A Colorful Model for Genetics, Biochemistry, Cell Biology, and Biotechnology, „Plant Physiology”, 126 (2), 2001, s. 485–493, DOI10.1104/pp.126.2.485, ISSN 0032-0889 [dostęp 2019-11-06].
  7. a b Paul M., Dewick, Medicinal natural products : a biosynthetic approach, wyd. 3rd edition, Chichester, West Sussex, United Kingdom, ISBN 978-0-470-74168-9, OCLC 259265604 [dostęp 2019-11-06].

Media użyte na tej stronie

Daidzein v2.gif
Autor: Deszra, Licencja: CC BY-SA 4.0
Proposed daidzein biosynthesis
Daidzein.png
Chemical Structure of Daidzein
Daidzein-3D-balls.png
Autor: Jynto (talk), Licencja: CC0

Ball-and-stick model of the Daidzein molecule, a compound of the isoflavones class.

Colour code:

 Carbon, C: black
 Hydrogen, H: white
 Oxygen, O: red