Hybrydogeneza żab zielonych

Wydający głos samiec żaby wodnej z rezonatorami

Hybrydogeneza u żab zielonychhybrydogeneza zachodząca u żab zielonych, które tworzą sztuczną grupę systematyczną w rodzaju Pelophylax. U polskich żab zielonych kleptonami (mieszańcami powstałymi na drodze hybrydogenezy) są następujące gatunki Pelophylax sp.:

i być może P. demarchii oraz P. terentievi.
Typowa gametogeneza u żaby wodnej Pelophylax kl. esculentus (w systemie L-E). 1 – eliminacja genomu żaby jeziorkowej Pelophylax lessonae, 2 – duplikacja (endoreduplikacja) genomu żaby śmieszki P. ridibundus – przywrócenie diploidalnej liczby chromosomów, 3 – mejoza, L i R – genomy żaby jeziorkowej i śmieszki[2]

Żaba wodna (Pelophylax kl. esculentus) jest płodnym mieszańcem dwóch pozostałych krajowych gatunków żab zielonychżaby jeziorkowej (P. lessonae) oraz żaby śmieszki (P. ridibundus). Rozmnaża się i powstaje jednak głównie poprzez krzyżówki wsteczne samic z samcami jednego z gatunków rodzicielskich (P. kl. esculentus × P. lessonae lub rzadziej × P. ridibundus)[3][4][5][6][7][8].

Cechą charakterystyczną hybrydogenezy jest to, że gamety wytwarzane przez hybrydy nie zawierają mieszaniny genomów rodzicielskich. Normalnie na skutek niezależnej segregacji chromosomów i crossing-over podczas mejozy gamety zawierają mieszaninę genów pochodzących od obojga rodziców osobnika wytwarzającego gamety, w przypadku hybrydogenezy natomiast zawierają one nienaruszony jeden z genomów rodziców (w szczególnych przypadkach obydwa). Dzieje się tak, ponieważ zwykle genom jednego z gatunków rodzicielskich jest usuwany przed mejozą podczas gametogenezy. Brakujący genom jest potem przywracany zwykle w wyniku krzyżówki wstecznej z odpowiednim gatunkiem rodzicielskim[8][2].

Hybrydogeneza u żaby wodnej jest więc hemiklonalnym sposobem rozmnażania się – połowa genomu hybrydy jest przekazywana nietknięta klonalnie z pokolenia na pokolenie (genom R w tzw. systemie L-E) – niezrekombinowana z genomem gatunku rodzicielskiego (L tutaj), podczas gdy druga połowa (L) jest przekazywana płciowo – otrzymywana w każdym pokoleniu poprzez krzyżowanie się z gatunkiem rodzicielskim (P. lessonae w systemie L-E)[9][10].

Typowa hybrydyzacja pomiędzy żabą wodną a śmieszką w systemie R-E.

W najbardziej rozpowszechnionym systemie populacji L-E (lessonae-esculentus) żaby P. kl. esculentus podczas gametogenezy wykluczają genom P. lessonae i wytwarzają wyłącznie gamety P. ridibunda, co oznacza, że żaba wodna wytwarza gamety żaby śmieszki (ilustracje u góry). Są jednak jeszcze inne systemy, spośród których najbardziej znany jest system R-E (ridibunda-esculentus). W tym przypadku żaby P. kl. esculentus wytwarzają głównie (ale nie wyłącznie) gamety P. lessonae.
W systemie L-E P. kl. esculentus muszą krzyżować się z P. lessonae, żeby powstały nowe hybrydy, w systemie R-E z P. ridibundus (ilustracja z lewej strony)[8][11]. P. lessonae i P. ridibundus mają odmienne wymagania w stosunku do środowiska i zwykle nie występują razem[12].

Ponadto P. kl. esculentus mogą być nie tylko diploidalnymi hybrydami (LR), ale w niektórych rejonach również triploidalnymi (LLR i LRR), a nawet tetraploidalnymi (LLRR). Triploidalne hybrydy umożliwiają istnienie populacji P. kl. esculentus bez gatunków rodzicielskich P. lessonae i P. ridibundus, jednakże teoria ta zawiera wciąż luki[8], a pomimo dziesiątek lat badań niewiele jest wiadomo o tych żabach.

Utrzymywanie się czystych populacji P. kl. esculentus, bez krzyżówek wstecznych z P. lessonae i ridibundus[8]
L, Rhaploidalne genomy P. lessonae i ridibundus
LL, RR – nie dożywają do okresu dojrzałości płciowej
* tylko samice (komórki jajowe)

Przypisy

  1. a b G. Holsbeek, R. Jooris. Potential impact of genome exclusion by alien species in the hybridogenetic water frogs (Pelophylax esculentus complex). „Biol Invasions”. 12, s. 1–13, 2010. Springer Netherlands. DOI: 10.1007/s10530-009-9427-2. ISSN 1387-3547. [dostęp 2015-06-21]. 
  2. a b Tunner H. G., Heppich-Tunner S.. Genome exclusion and two strategies of chromosome duplication in oogenesis of a hybrid frog. „Naturwissenschaften”. 78 (1), s. 32-34, 1991. DOI: 10.1007/BF01134041. 
  3. a b Włodzimierz Juszczyk: Płazy i gady krajowe. T. 2: Płazy. Warszawa: Państwowe Wydawnictwo Naukowe, 1987. ISBN 83-01-05696-7.
  4. Leszek Berger: Płazy i gady Polski. Klucz do oznaczania.. Wyd. pierwsze. Warszawa-Poznań: Państwowe Wydawnictwo Naukowe, 2000. ISBN 83-01-13139-X.
  5. a b Berger, L.. Some characteristics of the crossess within Rana esculenta complex in postlarval development. „Ann. Zool.”. 27, s. 374-416, 1970. 
  6. a b C Spolsky andT Uzzell. Evolutionary history of the hybridogenetic hybrid frog Rana esculenta as deduced from mtDNA analyses. „Mol Biol Evol”. 3 (1), s. 44-56, 1986. PMID: 2832687. 
  7. a b Gaby Abt Tietje and Heinz-Ulrich Reyer. Larval Development and Recruitment of Juveniles in a Natural Population of Rana lessonae and Rana esculenta. „Copeia”. 3, s. 638–646, 2004. DOI: 10.1643/CE-03-273R1. 
  8. a b c d e f Christiansen D. G.. Gamete types, sex determination and stable equilibria of all-hybrid populations of diploid and triploid edible frogs (Pelophylax esculentus) Rana esculenta as deduced from mtDNA analyses. „BMC Evolutionary Biology”. 9 (135), 2009. DOI: 10.1186/1471-2148-9-135. PMID: 19527499. 
  9. Simon J.-C., Delmotte F., Rispe C., Crease T.. Phylogenetic relationships between parthenogens and their sexual relatives: the possible routes to parthenogenesis in animals. „Biological Journal of the Linnean Society”. 79, s. 151–163, 2003. [dostęp 2012-07-30]. 
  10. Vrijenhoek R. C.: Parthenogenesis and Natural Clones.. W: Knobil E., Neill J. D. (Ed.): Encyclopedia of Reproduction. T. 3. San Diego, Calif.: Academic Press, 1999, s. 695-702. ISBN 0-12-227020-7. [dostęp 2012-08-09].
  11. Ragghianti M, Bucci S, Marracci S, Casola C, Mancino G, Hotz H, Guex GD, Plötner J, Uzzell T. Gametogenesis of intergroup hybrids of hemiclonal frogs. „Genet Res.”. 89 (1), s. 39-45, Feb 2007. DOI: 10.1017/S0016672307008610. PMID: 17517158. 
  12. Holenweg Peter A. K.. Dispersal rates and distances in adult water frogs, Rana lessonae, R. ridibunda and their hybridogenetic associate R. esculenta. „Herpetologica”. 57 (4), s. 449-460, 2001. Herpetologists' League. [dostęp 2012-07-26]. 

Media użyte na tej stronie

Teichfrosch1.jpg
Autor: Sebaho, Licencja: CC BY-SA 3.0
Edible Frog, calling male from Mecklenburg-West Pomerania, Germany.
Hybridization in green frogs RE.gif
Autor: Darekk2, Licencja: CC BY-SA 3.0
Typical hybridization (and hybridogenesis) between Edible Frog (Pelophylax kl. esculentus, P. lessonae × P. ridibundus) and Marsh Frog (Pelophylax ridibundus) in RE (ridibundus-esculentus) hybridogenetic population.
Hemiclonal LE.gif
Autor: Darekk2, Licencja: CC BY-SA 3.0
Hybridogenesis is a hemiclonal mode of reproduction (red arrows). Population system L-E here.
Hybridization in green frogs.gif
Autor: Darekk2, Licencja: CC BY-SA 3.0
Typical hybridization (and hybridogenesis) between Pool Frog (Pelophylax lessonae), Marsh Frog (Pelophylax ridibundus) and Edible Frog (Pelophylax kl. esculentus, P. lessonae × P. ridibundus) in the native LE (lessonae-esculentus) hybridogenetic population system invaded additionally by P. ridibundus.
Pelophylax esculentus - gametogenesis LE.gif
Autor: Darekk2, Licencja: CC BY-SA 3.0
Pelophylax esculentus, gametogenesis, LE population system, 1 - exclusion of the P. lessonae genome, 2 - duplication (endoreduplication) of the P. ridibundus genome, 3 - meiosis.